Preview

Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии

Расширенный поиск

Роль дефектов аутофагии и значение адгезивно-инвазивных Escherichia coli в генезе болезни Крона

Аннотация

Цель обзора. Представить новые данные о роли молекулярно-генетических нарушений врожденного иммунитета при болезни Крона (БК), а также осветить значение адгезивно-инвазивных Escherichia coli (АИEC) как микроорганизмов, потенциально участвующих в генезе БК.
Основные положения. С современных позиций этиология БК носит комплексный характер и определяется такими компонентами, как генетическая предрасположенность, инфекционный агент и средовые факторы. Одним из базовых для БК генетически-детерминированных нарушений врожденного иммунитета является альтерация процесса аутофагии (дефекты генов NOD2/CARD15, ATG16L1, IRGM). Помимо этого для БК характерны дисбиотические нарушения кишечника, ассоциированные с повышением количества микроорганизмов, обладающих патогенным потенциалом, в частности АИEC. Данный фенотип микроорганизмов обладает способностями к адгезии к эпителиоцитам слизистой оболочки, внедрению в них, а также к активной репликации внутри макрофагов. У лиц с генетической предрасположенностью репликация АИEC в макрофагах в условиях сниженного клиренса микроорганизмов за счет альтерации процесса аутофагии может индуцировать иррациональный иммунный ответ с развитием характерных для БК воспалительных изменений.
Заключение. В основе современной модели развития БК лежат дисбиотические нарушения кишечника, ассоциированные с повышением количества микроорганизмов, обладающих патогенным потенциалом (АИEC), а также генетически-детерминированные дефекты механизмов врожденного иммунитета (альтерация аутофагии). Безусловно, такая модель скорее всего правомочна только для определенной части популяции пациентов с БК, тем не менее на настоящий момент она является базисом для дальнейшего изучения этиопатогенеза рассматриваемой патологии.

Об авторах

И. В. Маев
ГБОУ ВПО «Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова» Минздрава России
Россия

Маев Игорь Вениаминович — доктор медицинских наук, профессор, заслуженный врач РФ, заслуженный деятель науки РФ, член-корреспондент РАН, проректор по учебной работе, заведующий кафедрой пропедевтики внутренних болезней и гастроэнтерологии



Д. Н. Андреев
ГБОУ ВПО «Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова» Минздрава России
Россия

Андреев Дмитрий Николаевич — ассистент кафедры пропедевтики внутренних болезней и гастроэнтерологии



Д. В. Ракитина
ФГБУН «Научно-исследовательский институт физико-химической медицины» Федерального медико-биологического агентства
Россия

Ракитина Дарья Викторовна — кандидат биологических наук, старший научный сотрудник лаборатории протеомного анализа



Ю. П. Байкова
ФГБУН «Научно-исследовательский институт физико-химической медицины» Федерального медико-биологического агентства
Россия

Байкова Юлия Павловна — кандидат биологических наук, научный сотрудник лаборатории протеомного анализа 



Список литературы

1. Рекомендации Российской гастроэнтерологической ассоциации по лечению болезни Крона у взрослых (проект). Рос. журн. гастроэнтерол. гепатол. колопроктол. 2012; 6:66-82.

2. Маев И.В., Андреев Д.Н. Новые подходы к диагностике и лечению болезни Крона. Тер архив. 2014; 8:4-12.

3. Molodecky N.A., Soon I.S., Rabi D.M., et al. Increasing incidence and prevalence of the inflammatory bowel diseases with time, based on systematic review. Gastroenterology. 2012; 142(1):46-54

4. Burisch J., Munkholm P. Inflammatory bowel disease epidemiology. Curr Opin Gastroenterol. 2013; 29 (4):357-62.

5. Kappelman M.D., Moore K.R., Allen J.K., Cook S.F. Recent trends in the prevalence of Crohn’s disease and ulcerative colitis in a commercially insured US population. Dig Dis Sci. 2013; 58(2):519-25.

6. Парфенов А.И. Болезнь Крона: к 80-летию описания. Тер архив. 2013; 8:35-42.

7. Carrière J., Darfeuille-Michaud A., Nguyen H.T. Infectious etiopathogenesis of Crohn›s disease. World J Gastroenterol. 2014; 20(34):12102-17.

8. Xavier R.J., Podolsky D.K. Unravelling the pathogenesis of inflammatory bowel disease. Nature. 2007; 448(7152):427-34.

9. Strober W., Fuss I., Mannon P. The fundamental basis of inflammatory bowel disease. J Clin Invest. 2007; 117(3):514-21.

10. Halme L., Paavola-Sakki P., Turunen U., Lappalainen M., Farkkila M., Kontula K. Family and twin studies in inflammatory bowel disease. World J Gastroenterol. 2006; 12:3668-3672.

11. Peeters M., Nevens H., Baert F., Hiele M., de Meyer A.M., Vlietinck R., Rutgeerts P. Familial aggregation in Crohn`s disease: Increased age-adjusted risk and concordance in clinical characteristics. Gastroenterology 1996; 111:597-603.

12. Dorn S.D., Abad J.F., Panagopoulos G., Korelitz B.I. Clinical characteristics of familial versus sporadic Crohn›s disease using the Vienna Classification. Inflamm Bowel Dis 2004; 10:201-206.

13. Brant S.R. Update on the heritability of inflammatory bowel disease: the importance of twin studies. Inflamm Bowel Dis. 2011; 17:1-5.

14. Sands B.E., Siegel C.A. Crohn›s disease. In: Feldman M., Friedman L.S., Brandt L.J., eds. Sleisenger & Fordtran`s Gastrointestinal and Liver Disease. 9th ed. Philadelphia, Pa: Saunders Elsevier; 2010: chap 111.

15. Маев И.В., Андреев Д.Н. Молекулярно-генетические механизмы развития болезни Крона. Молекулярная медицина. 2014; 3:21-27.

16. Jostins L., Ripke S., Weersma R.K., Duerr R.H., McGovern D.P., Hui K.Y. Host-microbe interactions have shaped the genetic architecture of inflammatory bowel disease. Nature. 2012; 491:119-124.

17. Liu J.Z., Anderson C.A. Genetic studies of Crohn›s disease: past, present and future. Best Pract Res Clin Gastroenterol. 2014; 28(3):373-86.

18. Nguyen H.T., Lapaquette P., Bringer M.A., DarfeuilleMichaud A. Autophagy and Crohn›s disease. J Innate Immun. 2013; 5(5):434-43.

19. Klionsky D.J., Emr S.D. Autophagy as a regulated pathway of cellular degradation. Science. 2000; 290(5497):1717-21.

20. Kirkegaard K., Taylor M.P., Jackson W.T. Cellular autophagy: surrender, avoidance and subversion by microorganisms. Nat Rev Microbiol. 2004; 2(4):301-14.

21. Levine B. Eating oneself and uninvited guests: autophagy-related pathways in cellular defense. Cell. 2005; 120(2):159-62.

22. Schmid D., Pypaert M., Münz C. Antigen-loading compartments for major histocompatibility complex class II molecules continuously receive input from autophagosomes. Immunity. 2007; 26(1):79-92.

23. Hugot J.P., Chamaillard M., Zouali H., Lesage S., Cézard J.P., Belaiche J., Almer S., Tysk C., O`Morain C.A., Gassull M., Binder V., Finkel Y., Cortot A., Modigliani R., Laurent-Puig P., GowerRousseau C., Macry J., Colombel J.F., Sahbatou M., Thomas G. Association of NOD2 leucine-rich repeat variants with susceptibility to Crohn›s disease. Nature 2001; 411:599-603.

24. Ogura Y., Bonen D.K., Inohara N., Nicolae D.L., Chen F.F., Ramos R, Britton H, Moran T., Karaliuskas R., Duerr R.H., Achkar J.P., Brant S.R., Bayless T.M., Kirschner B.S., Hanauer S.B., Nuñez G, Cho J.H. A frameshift mutation in NOD2 associated with susceptibility to Crohn›s disease. Nature 2001; 411:603-6.

25. Girardin S.E., Boneca I.G., Viala J., Chamaillard M., Labigne A., Thomas G., Philpott D.J., Sansonetti P.J. Nod2 is a general sensor of peptidoglycan through muramyl dipeptide (MDP) detection. J Biol Chem. 2003; 278(11):8869-72.

26. Grimes C.L., Ariyananda Lde Z., Melnyk J.E., O'Shea E.K. The innate immune protein Nod2 binds directly to MDP, a bacterial cell wall fragment. J Am Chem Soc. 2012; 134(33):13535-7.

27. Lala S., Ogura Y., Osborne C., Hor S.Y., Bromfield A., Davies S., Ogunbiyi O., Nuñez G., Keshav S. Crohn's disease and the NOD2 gene: A role for paneth cells. Gastroenterology 2003; 125:47-57.

28. Cooney R., Baker J., Brain O., Danis B, Pichulik T., Allan P., Ferguson D.J., Campbell B.J., Jewell D., Simmons A. NOD2 stimulation induces autophagy in dendritic cells influencing bacterial handling and antigen presentation. Nat Med. 2010; 16(1):90-7.

29. Travassos L.H., Carneiro L.A., Ramjeet M., Hussey S., Kim Y.G., Magalhães J.G., Yuan L., Soares F., Chea E., Le Bourhis L., Boneca IG., Allaoui A., Jones NL., Nuñez G., Girardin S.E., Philpott D.J. Nod1 and Nod2 direct autophagy by recruiting ATG16L1 to the plasma membrane at the site of bacterial entry. Nat Immunol. 2010; 11:55-62.

30. Lesage S., Zouali H., Cezard J.P., Colombel J.F., Belaiche J., Almer S., Tysk C., O'Morain C., Gassull M., Binder V., Finkel Y., Modigliani R., Gower-Rousseau C., Macry J., Merlin F., Chamaillard M., Jannot A.S., Thomas G., Hugot J.P. CARD15/NOD2 mutational analysis and genotype-phenotype correlation in 612 patients with inflammatory bowel disease. Am J Hum Genet 2002; 70:845-57.

31. Tsianos E.V., Katsanos K.H., Tsianos V.E. Role of genetics in the diagnosis and prognosis of Crohn's disease. World J Gastroenterol. 2012; 18(2):105-18.

32. Yazdanyar S., Weischer M., Nordestgaard B.G. Genotyping for NOD2 genetic variants and crohn disease: a metaanalysis. Clin Chem. 2009; 55(11):1950-7.

33. Yamamoto S., Ma X. Role of Nod2 in the development of Crohn's disease. Microbes Infect. 2009; 11(12):912-918.

34. Barrett J.C., Hansoul S., Nicolae D.L., Cho J.H., Duerr R.H., Rioux J.D., Brant S.R., Silverberg M.S., Taylor K.D., Barmada M.M., Bitton A., Dassopoulos T., Datta L.W., Green T., Griffiths A.M., Kistner E.O., Murtha M.T., Regueiro M.D., Rotter J.I., Schumm L.P., Steinhart A.H., Targan S.R., Xavier R.J., NIDDK IBD Genetics Consortium, Libioulle C., Sandor C., Lathrop M., Belaiche J., Dewit O., Gut I., Heath S., Laukens D., Mni M., Rutgeerts P., Van Gossum A., Zelenika D., Franchimont D., Hugot J.P., de Vos M., Vermeire S., Louis E.; Belgian-French IBD Consortium; Wellcome Trust Case Control Consortium, Cardon L.R., Anderson C.A., Drummond H., Nimmo E., Ahmad T., Prescott N.J., Onnie C.M., Fisher S.A., Marchini J., Ghori J., Bumpstead S., Gwilliam R., Tremelling M., Deloukas P., Mansfield J., Jewell D., Satsangi J., Mathew C.G., Parkes M., Georges M., Daly M.J. Genome-wide association defines more than 30 distinct susceptibility loci for Crohn's disease. Nat Genet 2008; 40:955-62.

35. Hampe J., Franke A., Rosenstiel P., Till A., Teuber M., Huse K., Albrecht M., Mayr G., De La Vega F.M., Briggs J., Günther S., Prescott N.J., Onnie C.M., Häsler R., Sipos B., Fölsch U.R., Lengauer T., Platzer M., Mathew C.G., Krawczak M., Schreiber S. A genome-wide association scan of nonsynonymous SNPs identifies a susceptibility variant for Crohn's disease in ATG16L1. Nat Genet 2007; 39(2):207-11.

36. Rioux J.D., Xavier R.J., Taylor K.D., Silverberg M.S., Goyette P., Huett A., Green T., Kuballa P., Barmada M.M., Datta L.W., Shugart Y.Y., Griffiths A.M., Targan S.R., Ippoliti A.F., Bernard E.J., Mei L., Nicolae D.L., Regueiro M., Schumm L.P., Steinhart A.H., Rotter J.I., Duerr R.H., Cho J.H., Daly M.J., Brant SR. Genome-wide association study identifies new susceptibility loci for Crohn disease and implicates autophagy in disease pathogenesis. Nat Genet 2007; 39:596-604.

37. Marcuzzi A., Bianco A.M., Girardelli M., Tommasini A., Martelossi S., Monasta L., Crovella S. Genetic and functional profiling of Crohn's disease: autophagy mechanism and susceptibility to infectious diseases. Biomed Res Int. 2013; 2013:297501.

38. Maev I.V., Andreev D.N. Role of mutations in NOD2/ CARD15, ATG16L1, and IRGM in the pathogenesis of Crohn’s disease. International Journal of Biomedicine. 2014; 4(1):7-10.

39. Kuballa P., Huett A., Rioux J.D., Daly M.J., Xavier R.J. Impaired autophagy of an intracellular pathogen induced by a Crohn›s disease associated ATG16L1 variant. PLoS One. 2008; 3(10):e3391

40. Cadwell K., Liu J.Y., Brown S.L., Miyoshi H., Loh J., Lennerz JK., Kishi C., Kc W., Carrero J.A., Hunt S., Stone C.D., Brunt E.M., Xavier RJ., Sleckman B.P., Li E., Mizushima N., Stappenbeck T.S., Virgin H.W. 4th. A key role for autophagy and the autophagy gene Atg16l1 in mouse and human intestinal Paneth cells. Nature. 2008; 456(7219):259-63

41. Parkes M., Barrett J.C., Prescott N.J., Tremelling M., Anderson C.A., Fisher S.A., Roberts R.G., Nimmo E.R., Cummings F.R., Soars D., Drummond H., Lees CW., Khawaja S.A., Bagnall R., Burke D.A., Todhunter C.E., Ahmad T., Onnie C.M., McArdle W., Strachan D., Bethel G., Bryan C., Lewis C.M., Deloukas P., Forbes A., Sanderson J., Jewell D.P., Satsangi J., Mansfield J.C; Wellcome Trust Case Control Consortium, Cardon L., Mathew C.G. Sequence variants in the autophagy gene IRGM and multiple other replicating loci contribute to Crohn's disease susceptibility. Nat Genet 2007; 39:830-2.

42. Taylor G.A., Feng C.G., Sher A. p47 GTPases: regulators of immunity to intracellular pathogens. Nat Rev Immunol. 2004; 4(2):100-9.

43. Singh S.B., Davis A.S., Taylor G.A., Deretic V. Human IRGM induces autophagy to eliminate intracellular mycobacteria. Science. 2006; 313(5792):1438-41.

44. Hold G.L., Smith M., Grange C., Watt ER., El-Omar E.M., Mukhopadhya I. Role of the gut microbiota in inflammatory bowel disease pathogenesis: what have we learnt in the past 10 years? World J Gastroenterol. 2014; 20(5):1192-210.

45. Mondot S., Kang S., Furet J.P., Aguirre de Carcer D., McSweeney C., Morrison M., Marteau P., Doré J., Leclerc M. Highlighting new phylogenetic specificities of Crohn’s disease microbiota. Inflamm Bowel Dis. 2011; 17:185-92.

46. Baumgart M., Dogan B., Rishniw M., Weitzman G., Bosworth B., Yantiss R., Orsi RH., Wiedmann M., McDonough P., Kim S.G., et al. Culture independent analysis of ileal mucosa reveals a selective increase in invasive Escherichia coli of novel phylogeny relative to depletion of Clostridiales in Crohn’s disease involving the ileum. ISME J. 2007; 1:403-18

47. Kotlowski R., Bernstein CN., Sepehri S., Krause D.O. High prevalence of Escherichia coli belonging to the B2+D phylogenetic group in inflammatory bowel disease. Gut. 2007; 56:669-75.

48. Gevers D., Kugathasan S., Denson L.A., VázquezBaeza Y., Van Treuren W., Ren B., Schwager E., Knights D., Song S.J., Yassour M., Morgan X.C., Kostic A.D., Luo C., González A., McDonald D., Haberman Y., Walters T., Baker S., Rosh J., Stephens M., Heyman M., Markowitz J., Baldassano R., Griffiths A., Sylvester F., Mack D., Kim S., Crandall W., Hyams J., Huttenhower C., Knight R., Xavier R.J. The treatment-naive microbiome in new-onset Crohn›s disease. Cell Host Microbe. 2014; 15(3):382-92.

49. Parkes G.C., Whelan K., Lindsay J.O. Smoking in inflammatory bowel disease: Impact on disease course and insights into the aetiology of its effect. J Crohns Colitis. 2014; 8:717-25.

50. Chapman-Kiddell C.A., Davies P.S., Gillen L., Radford-Smith G.L. Role of diet in the development of inflammatory bowel disease. Inflamm Bowel Dis. 2010; 16:137-151.

51. Frolkis A., Dieleman L.A., Barkema HW., Panaccione R., Ghosh S., Fedorak R.N., Madsen K., Kaplan G.G. Environment and the inflammatory bowel diseases. Can J Gastroenterol. 2013; 27:e18-e24.

52. Smith E.J., Thompson A.P., O'Driscoll A., Clarke D.J. Pathogenesis of adherent-invasive Escherichia coli. Future Microbiol. 2013; 8(10):1289-300.

53. Darfeuille-Michaud A., Boudeau J., Bulois P., Neut C., Glasser A.L., Barnich N., Bringer M.A., Swidsinski A., Beaugerie L., Colombel J.F. High prevalence of adherent-invasive Escherichia coli associated with ileal mucosa in Crohn’s disease. Gastroenterology. 2004; 127:412-21.

54. Landers C.J., Cohavy O., Misra R., Yang H., Lin Y.C., Braun J., Targan SR. Selected loss of tolerance evidenced by Crohn‘s disease-associated immune responses to auto and microbial antigens. Gastroenterology 2002; 123(3),689-99.

55. Mei L., Targan S.R., Landers C.J., Dutridge D., Ippoliti A., Vasiliauskas E.A., Papadakis K.A., Fleshner P.R., Rotter J.I., Yang H. Familial expression of antiEscherichia coli outer membrane porin C in relatives of patients with Crohn‘s disease. Gastroenterology 2006; 130(4),1078-85.

56. Martinez-Medina M., Garcia-Gil L.J. Escherichia coli in chronic inflammatory bowel diseases: An update on adherent invasive Escherichia coli pathogenicity. World J Gastrointest Pathophysiol. 2014; 5(3):213-27.

57. Darfeuille-Michaud A. Adherent-invasive Escherichia coli: a putative new E. coli pathotype associated with Crohn’s disease. Int J Med Microbiol. 2002; 292:185-193.

58. Martinez-Medina M., Aldeguer X., Lopez-Siles M., González-Huix F., López-Oliu C., Dahbi G., Blanco J.E., Blanco J., Garcia-Gil L.J., Darfeuille-Michaud A. Molecular diversity of Escherichia coli in the human gut: new ecological evidence supporting the role of adherentinvasive E. coli (AIEC) in Crohn’s disease. Inflamm Bowel Dis. 2009; 15(6):872-82.

59. Vejborg R.M., Hancock V., Petersen A.M., Krogfelt K.A., Klemm P. Comparative genomics of Escherichia coli isolated from patients with inflammatory bowel disease. BMC Genomics. 2011; 12:316.

60. Sobieszczańska B.A., Duda-Madej A.B., Turniak M.B., Franiczek R., Kasprzykowska U., Duda A.K., Rzeszutko M., Iwańczak B. Invasive properties, adhesion patterns and phylogroup profiles among Escherichia coli strains isolated from children with inflammatory bowel disease. Adv Clin Exp Med. 2012 Sep-Oct; 21(5):591-9.

61. Conte M.P., Longhi C., Marazzato M., Conte A.L., Aleandri M., Lepanto M.S., Zagaglia C., Nicoletti M., Aloi M., Totino V., Palamara A.T., Schippa S. Adherent-invasive Escherichia coli (AIEC) in pediatric Crohn’s disease patients: phenotypic and genetic pathogenic features. BMC Res Notes. 2014 Oct 22; 7:748.

62. Barnich N., Carvalho F.A., Glasser A.L., Darcha C., Jantscheff P., Allez M., Peeters H., Bommelaer G., Desreumaux P., Colombel J.F., et al. CEACAM6 acts as a receptor for adherent-invasive E. coli, supporting ileal mucosa colonization in Crohn disease. J Clin Invest. 2007; 117:1566-74.

63. Barnich N., Darfeuille-Michaud A. Role of bacteria in the etiopathogenesis of inflammatory bowel disease. World J. Gastroenterol 2007; 13(42),5571-76.

64. Barnich N., Darfeuille-Michaud A. Abnormal CEACAM6 expression in Crohn disease patients favors gut colonization and inflammation by adherent-invasive E. coli. Virulence 2010; 1(4):281-2.

65. Chassaing B., Rolhion N., de Vallée A., Salim S.Y., Prorok-Hamon M., Neut C., Campbell B.J., Söderholm J.D., Hugot J.P., Colombel J.F., et al. Crohn disease-associated adherent-invasive E. coli bacteria target mouse and human Peyer’s patches via long polar fimbriae. J Clin Invest. 2011; 121:966-75.

66. Nickerson K.P., McDonald C. Crohn’s disease-associated adherent-invasive Escherichia coli adhesion is enhanced by exposure to the ubiquitous dietary polysaccharide maltodextrin. PLoS One. 2012; 7:e52132.

67. Rolhion N., Barnich N., Bringer M.A., Glasser A.L., Ranc J., Hébuterne X., Hofman P., DarfeuilleMichaud A. Abnormally expressed ER stress response chaperone Gp96 in CD favours adherent-invasive Escherichia coli invasion. Gut. 2010; 59:1355-62.

68. Subramanian S., Rhodes J.M., Hart C.A., Tam B., Roberts C.L., Smith S.L., Corkill J.E., Winstanley C., Virji M., Campbell B.J. Characterization of epithelial IL-8 response to inflammatory bowel disease mucosal E. coli and its inhibition by mesalamine. Inflamm Bowel Dis. 2008; 14:162-75.

69. Eaves-Pyles T., Allen C.A., Taormina J., Swidsinski A., Tutt C.B., Jezek G.E., Islas-Islas M., Torres A.G. Escherichia coli isolated from a Crohn’s disease patient adheres, invades, and induces inflammatory responses in polarized intestinal epithelial cells. Int J Med Microbiol. 2008; 298:397-409.

70. Glasser A.L., Boudeau J., Barnich N., Perruchot M.H., Colombel J.F., Darfeuille-Michaud A. Adherent invasive Escherichia coli strains from patients with Crohn’s disease survive and replicate within macrophages without inducing host cell death. Infect Immun. 2001; 69:5529-37.

71. Lapaquette P., Glasser A.L., Huett A., Xavier R.J., Darfeuille-Michaud A. Crohn’s disease-associated adherent-invasive E. coli are selectively favoured by impaired autophagy to replicate intracellularly. Cell Microbiol. 2010; 12:99-113.

72. Sadaghian Sadabad M., Regeling A., de Goffau M.C., Blokzijl T., Weersma R.K., Penders J., Faber K.N., Harmsen H.J., Dijkstra G. The ATG16L1-T300A allele impairs clearance of pathosymbionts in the inflamed ileal mucosa of Crohn’s disease patients. Gut. 2014 Sep 24. pii: gutjnl-2014-307289. doi

73. Nguyen H.T., Dalmasso G., Müller S., Carrière J., Seibold F., Darfeuille-Michaud A. Crohn’s diseaseassociated adherent invasive Escherichia coli modulate levels of microRNAs in intestinal epithelial cells to reduce autophagy. Gastroenterology. 2014; 146(2):508-19.

74. Dunne K.A., Allam A., McIntosh A., Houston S.A., Cerovic V., Goodyear C.S., Roe A.J., Beatson S.A., Milling S.W., Walker D., et al. Increased S-nitrosylation and proteasomal degradation of caspase-3 during infection contribute to the persistence of adherent invasive Escherichia coli (AIEC) in immune cells. PLoS One. 2013; 8:e68386.

75. Meconi S., Vercellone A., Levillain F., Payré B., Al Saati T., Capilla F., Desreumaux P., DarfeuilleMichaud A., Altare F. Adherent-invasive Escherichia coli isolated from Crohn’s disease patients induce granulomas in vitro. Cell Microbiol. 2007; 9:1252-61.

76. Ossa J.C., Ho N.K., Wine E., Leung N., Gray-Owen S.D., Sherman P.M. Adherent-invasive Escherichia coli blocks interferon-γ-induced signal transducer and activator of transcription (STAT)-1 in human intestinal epithelial cells. Cell Microbiol. 2013; 15:446-57.

77. Carvalho F.A., Barnich N., Sivignon A., Darcha C., Chan C.H., Stanners C.P., Darfeuille-Michaud A. Crohn’s disease adherent-invasive Escherichia coli colonize and induce strong gut inflammation in transgenic mice expressing human CEACAM. J Exp Med. 2009; 206(10):2179-89.

78. Small C.L., Reid-Yu S.A., McPhee J.B., Coombes B.K. Persistent infection with Crohn’s disease-associated adherent-invasive Escherichia coli leads to chronic inflammation and intestinal fibrosis. Nat Commun. 2013; 4:1957.

79. Subramanian S., Roberts C.L., Hart C.A., Martin H.M., Edwards S.W., Rhodes J.M., Campbell B.J. Replication of Colonic Crohn’s Disease Mucosal Escherichia coli Isolates within Macrophages and Their Susceptibility to Antibiotics. Antimicrob Agents Chemother. 2008; 52(2):427-34.

80. Dogan B., Scherl E., Bosworth B., Yantiss R., Altier C., McDonough P.L., Jiang Z.D., Dupont H.L., Garneau P., Harel J., et al. Multidrug resistance is common in Escherichia coli associated with ileal Crohn’s disease. Inflamm Bowel Dis. 2013; 19:141-150.

81. Martinez-Medina M., Naves P., Blanco J., Aldeguer X., Blanco J.E., Blanco M., Ponte C., Soriano F., DarfeuilleMichaud A., Garcia-Gil LJ. Biofilm formation as a novel phenotypic feature of adherent-invasive Escherichia coli (AIEC) BMC Microbiol. 2009; 9:202.


Рецензия

Для цитирования:


Маев И.В., Андреев Д.Н., Ракитина Д.В., Байкова Ю.П. Роль дефектов аутофагии и значение адгезивно-инвазивных Escherichia coli в генезе болезни Крона. Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. 2015;25(3):61-69.

For citation:


Mayev I.V., Andreev D.N., Rakitina D.V., Baykova Yu.P. Role of autophagy defects and significance of adherent-invasive Escherichia coli in Crohn's disease development. Russian Journal of Gastroenterology, Hepatology, Coloproctology. 2015;25(3):61-69. (In Russ.)

Просмотров: 89


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 License.


ISSN 1382-4376 (Print)
ISSN 2658-6673 (Online)