Хромоскопия с применением уксусной кислоты в предварительной диагностике гистологического типа образований толстой кишки при колоноскопии

Цель: повысить эффективность эндоскопической диагностики полипов зубчатого и незубчатого гистологического строения при колоноскопии в режиме реального времени.

Материалы и методы. С сентября 2017 по февраль 2018 г. было выявлено 63 полипа у 51 пациента (мужчин 11, женщин 40, возраст 30–78 лет, средний возраст 52,2 ± 12,5 года). Образования найдены во всех отделах толстой кишки, размеры варьировали: 24 (38,1 %) — <5 мм; 31 (49,2 %) — 6–10 мм; 8 (12,7 %) — >10 мм. Установлены макроскопические типы 0–IIа — 44 (69,8 %), 0–Is — 19 (30,2 %). При колоноскопии на идентифицированные полипы распыляли 5 мл 1,5%-уксусной кислоты, затем дополнительно подавали 40 мл воздуха. В течение 2 минут проводили наблюдение за образованиями в режимах белого света и в режиме узкого спектра света для большей контрастности изображения. Затем полипы удаляли и направляли на патоморфологическое исследование.

Результаты. Использование уксусной кислоты приводило к быстрой реакции ацетобеления полипов и окружающей слизистой оболочки. Были выделены 2 группы: 1) потеря ацетобеления образованиями происходила раньше, чем окружающей слизистой оболочкой — «отрицательная ацетобелая реакция»; 2) белый цвет образований сохранялся дольше, чем цвет окружающей слизистой оболочки, — «положительная ацетобелая реакция». В 1-ю группу вошли 25 (39,7 %) полипов, из них 88,0 % — незубчатый тип строения: 18 (72,0 %) — тубулярная аденома; 4 (16,0 %) — тубуло-ворсинчатая аденома, одна из которых имела тяжелую дисплазию. Только 3 (12,0 %) были зубчатого типа — гиперпластические полипы. Во 2-ю группу вошли 38 (60,3 %) полипов, из них 97,4 % зубчатого строения: 24 (63,2 %) — гиперпластические полипы; 12 (31,6 %) — зубчатые образования на широком основании, в том числе с дисплазией низкой степени, 1 (2,6 %) — традиционная зубчатая аденома. Только 1 полип (2,6 %) был незубчатого строения — тубулярная аденома. Это говорит о том, что «отрицательная ацетобелая реакция» у образований незубчатого типа строения происходит быстрее, чем окружающей слизистой оболочки. Диагностические чувствительность, специфичность, точность, положительная прогностическая ценность и прогностическая ценность отрицательного результата данного метода в диагностике незубчатых образований составили 95,7, 92,5, 93,7, 88,0, 97,4 % соответственно. У образований зубчатого типа строения «положительная ацетобелая реакция» отсрочена по сравнению с окружающей слизистой оболочкой. Диагностические чувствительность, специфичность, точность, положительная прогностическая ценность и прогностическая ценность отрицательного результата данного метода в диагностике зубчатых образований составили 92,5, 95,7, 93,7, 92,5, 88,0 % соответственно. Причина этого феномена требует дальнейшего изучения.

Выводы. Хромоэндоскопия с уксусной кислотой может служить как диагностический метод для определения гистологического типа полипов непосредственно при колоноскопии. 

1. Yamagishi H., Kuroda H., Imai Y., Hiraishi H. Molecular pathogenesis of sporadic colorectal cancers. Chin J Cancer. 2016;35:4. DOI: 10.1186/s40880-015-0066-y

2. Pancione M., Remo A., Colantuoni V. Genetic and epigenetic events generate multiple pathways in colorectal cancer progression. Patholog Res Int. 2012;2012:509348. DOI: 10.1155/2012/509348

3. Goto H., Oda Y., Murakami Y., Tanaka T., Hasuda K., Goto S., et al. Proportion of de novo cancers among colorectal cancers in Japan. Gastroenterology. 2006;131(1):40–6. DOI: 10.1053/j.gastro.2006.04.010

4. WHO Classification of tumours. 5th Edition. Digestive System Tumours. 2019.

5. Ferlitsch M., Moss A., Hassan C., Bhandari P., Dumonceau J.M., Paspatis G., et al. Colorectal polypectomy and endoscopic mucosal resection (EMR): European Society of Gastrointestinal Endoscopy (ESGE) Clinical Guideline. Endoscopy. 2017;49(3):270–97. DOI: 10.1055/s-0043-102569

6. Rex D.K., Kahi C., O’Brien M., Levin T.R., Pohl H., Rastogi A., et al. The American Society for Gastrointestinal Endoscopy PIVI (Preservation and Incorporation of Valuable Endoscopic Innovations) on real-time endoscopic assessment of the histology of diminutive colorectal polyps. Gastrointest Endosc. 2011;73(3):419–22. DOI: 10.1016/j. gie.2011.01.023

7. Obuch J.C., Pigott C.M., Ahnen D.J. Sessile serrated polyps: detection, eradication, and prevention of the evil twin. Curr Treat Options Gastroenterol. 2015;13(1):156– 70. DOI: 10.1007/s11938-015-0046-y

8. Takeuchi Y., Yamashina T., Matsuura N., Ito T., Fujii M., Nagai K., et al. Feasibility of cold snare polypectomy in Japan: A pilot study. World J Gastrointest Endosc. 2015;7(17):1250–6. DOI: 10.4253/wjge.v7.i17.1250

9. Ignjatovic A., East J.E., Suzuki N., Vance M., Guenther T., Saunders B.P. Optical diagnosis of small colorectal polyps at routine colonoscopy (Detect InSpect ChAracterise Resect and Discard; DISCARD trial): a prospective cohort study. Lancet Oncol. 2009;10(12):1171–8.

10. Tsuji S., Takeda Y., Tsuji K., Yoshida N., Takemura K., Yamada S., Doyama H. Clinical outcomes of the “resect and discard” strategy using magnifying narrow-band imaging for small (˂ 10 mm) colorectal polyps. Endosc Int Open. 2018;6(12):E1382–9. DOI: 10.1055/a-0650-4362

11. Hassan C., Antonelli G., Dumonceau J.M., Regula J., Bretthauer M., Chaussade S., et al. Post-polypectomy colonoscopy surveillance: European Society of Gastrointestinal Endoscopy (ESGE) Guideline — Update 2020. Endoscopy. 2020;52(8):687–700. DOI: 10.1055/a-1185-3109

12. Kaminski M.F., Thomas-Gibson S., Bugajski M., Bretthauer M., Rees C.J., Dekker E., et al. Performance measures for lower gastrointestinal endoscopy: a European Society of Gastrointestinal Endoscopy (ESGE) quality improvement initiative. United European Gastroenterol J. 2017;5(3):309–34. DOI: 10.1177/2050640617700014

13. Kim B.J., Park M.I., Park S.J., Moon W., Park E.T., Kim S.E., et al. Differential diagnosis of colorectal polyps with narrow band imaging colonoscopy without magnification. Korean J Gastroenterol. 2014;63(5):276–82. DOI: 10.4166/kjg.2014.63.5.276

14. Patrun J., Okreša L., Iveković H., Rustemović N. Diagnostic Accuracy of NICE Classification System for Optical Recognition of Predictive Morphology of Colorectal Polyps. Gastroenterol Res Pract. 2018;2018:7531368. DOI: 10.1155/2018/7531368

15. ASGE Technology Committee, Wong Kee Song L.M., Adler D.G., Chand B., Conway J.D., Croffie J.M., Disario J.A., et al. Chromoendoscopy. Gastrointest Endosc. 2007;66(4):639–49. DOI: 10.1016/j.gie.2007.05.029

16. Marina O.C., Sanders C.K., Mourant J.R. Effects of acetic acid on light scattering from cells. J Biomed Opt. 2012;17(8):085002-1. DOI: 10.1117/1.JBO.17.8.085002

17. Shier R.M. The colposcopy unit. Instrumentation, colposcopic technique, recording of findings, and terminology. Obstet Gynecol Clin North Am. 1993;20(1):47–67.

18. Guelrud M., Herrera I., Essenfeld H., Castro J. Enhanced magnification endoscopy: a new technique to identify specialized intestinal metaplasia in Barrett’s esophagus. Gastrointest Endosc. 2001;53(6):559–65. DOI: 10.1067/mge.2001.114059

19. Lambert R., Rey J.F., Sankaranarayanan R. Magnification and chromoscopy with the acetic acid test. Endoscopy. 2003;35(5):437–45. DOI: 10.1055/s-2003-38766

20. Sha J., Wang P., Zhu B., Zhu M., Li X., Gao F. Acetic Acid Enhanced Narrow Band Imaging for the Diagnosis of Gastric Intestinal Metaplasia. PLoS One. 2017;12(1):e0170957. DOI: 10.1371/journal.pone.0170957

21. Song K.H., Hwang J.A., Kim S.M., Ko H.S., Kang M.K., Ryu K.H., et al. Acetic acid chromoendoscopy for determining the extent of gastric intestinal metaplasia. Gastrointest Endosc. 2017 Feb;85(2):349–56. DOI: 10.1016/j.gie.2016.07.064

22. Sakai Y., Eto R., Kasanuki J., Kondo F., Kato K, Arai M., et al. Chromoendoscopy with indigo carmine dye added to acetic acid in the diagnosis of gastric neoplasia: a prospective comparative study. Gastrointest Endosc. 2008;68:635–41. DOI: 10.1016/j.gie.2008.03.1065

23. Lee B.E., Kim G.H., Park D.Y., Kim D.H., Jeon T.Y., Park S.B., et al. Acetic acid-indigo carmine chromoendoscopy for delineating early gastric cancers: its usefulness according to histological type. BMC Gastroenterol. 2010;10:97. DOI: 10.1186/1471-230X-10-97

24. Yamashita H., Kitayama J., Ishigami H., Yamada J., Miyato H., Kaisaki S., Nagawa H. Endoscopic instillation of indigo carmine dye with acetic acid enables the visualization of distinct margin of superficial gastric lesion; Usefulness in endoscopic treatment and diagnosis of gastric cancer. Dig Liver Dis. 2007;39(4):389–91. DOI: 10.1016/j.dld.2006.12.012

25. Tanaka K., Toyoda H., Kadowaki S., Kosaka R., Shiraishi T., et al. Features of early gastric cancer and gastric adenoma by enhanced-magnification endoscopy. J Gastroenterol. 2006;41(4):332–8. DOI: 10.1007/s00535-005-1760-3 26. Togashi K., Hewett D.G., Whitaker D.A., Hume G.E., Francis L., Appleyard M.N. The use of acetic acid in magnification chromocolonoscopy for pit pattern analysis of small polyps. Endoscopy. 2006;38(6):613–6. DOI: 10.1055/s-2006-925001

26. Parra-Blanco A., Fu K.I., Nicolás-Pérez D., GimenoGarcía A.Z., Carrillo M., Quintero E. Is acetic acid really effective as a mucolytic agent for magnifying colonoscopy diagnosis? Endoscopy. 2007;39(10):920–1; author reply 923. DOI: 10.1055/s-2007-966846

27. Singh R., Bhat Y.M., Thurairajah P.H., Shetti M.P., Jayanna M., et al. Is narrow band imaging superior to high-definition white light endoscopy in the assessment of diminutive colorectal polyps? J Gastroenterol Hepatol. 2013;28(3):472–8. DOI: 10.1111/jgh.12098

28. Wanders L.K., East J.E., Uitentuis S.E., Leeflang M.M., Dekker E. Diagnostic performance of narrowed spectrum endoscopy, autofluorescence imaging, and confocal laser endomicroscopy for optical diagnosis of colonic polyps: a meta-analysis. Lancet Oncol. 2013; 14(13):1337–47. DOI: 10.1016/S1470-2045(13)70509-6

29. Mason S.E., Poynter L., Takats Z., Darzi A., Kinross J.M. Optical Technologies for Endoscopic RealTime Histologic Assessment of Colorectal Polyps: A MetaAnalysis. Am J Gastroenterol. 2019;114(8):1219–30. DOI: 10.14309/ajg.0000000000000156

30. Khoo P., Mittar S., Kasaragod D., Lu Z., Matcher S.J. Depth-resolved dynamics of aceto-whitening in rabbit cornea studied by 1300nm optical coherence tomography. STM. 2015;7(1):52–9. DOI: 10.17691/stm2015.7.1.07

31. Maddox P., Szarewski A., Dyson J., Cuzick J. Cytokeratin expression and acetowhite change in cervical epithelium. J Clin Pathol. 1994;47(1):15–7. DOI: 10.1136/ jcp.47.1.15

32. Yamada S., Wirtz D., Coulombe P.A. Pairwise assembly determines the intrinsic potential for self-organization and mechanical properties of keratin filaments. Mol Biol Cell. 2002;13(1):382–91. DOI: 10.1091/mbc.01-10-0522

33. Balas C., Papoutsoglou G., Potirakis A. In vivo molecular imaging of cervical neoplasia using acetic acid as biomarker. IEEE J Select Topics Quantum Electron. 2008;14(1):29–42 DOI: 10.1109/JSTQE.2007.913396

34. Longcroft-Wheaton G., Brown J., Basford P., Cowlishaw D., Higgins B., Bhandari P. Duration of acetowhitening as a novel objective tool for diagnosing high risk neoplasia in Barrett’s esophagus: a prospective cohort trial. Endoscopy. 2013;45(6):426–32.

35. Wu T.T., Qu J., Cheung T.H., Yim S.F., Wong Y.F. Study of dynamic process of acetic acid induced-whitening in epithelial tissues at cellular level. Opt Express. 2005;13(13):4963–73. DOI: 10.1364/opex.13.004963