Preview

Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии

Расширенный поиск

Патогенез нарушений моторной функции толстой кишки при функциональном запоре

https://doi.org/10.22416/1382-4376-2024-34-3-24-37

Аннотация

Цель обзора: представить современные данные о ведущих звеньях патогенеза функционального запора.

Основные положения. Запор встречается у 15 % взрослого населения в мире и приводит к значимому снижению качества жизни, а в сочетании с некоторыми другими симптомами может свидетельствовать о наличии органической патологии желудочно-кишечного тракта. Патогенетической основой функционального запора (ФЗ) с медленным кишечным транзитом является снижение моторной функции толстой кишки, которое подтверждается результатами манометрии высокого разрешения. ФЗ характеризуется нарушениями таких моторных паттернов толстой кишки, как низко- и высокоамплитудные пропульсивные сокращения, сегментарные непропульсивные сокращения и общее повышение давления. Основные механизмы ФЗ, связанные с нейрогенной дисрегуляцией, включают нарушение функции серого и белого вещества головного мозга, а также повышение тонуса симпатической нервной системы при сопутствующем уменьшении влияний холинергических нервов, иннервирующих толстую кишку. Значимая роль в развитии ФЗ принадлежит уменьшению пула интерстициальных клеток, играющих роль кишечного водителя ритма, вследствие нарушения процесса их самообновления. Сопутствующие ФЗ изменения в энтеральной нервной системе включают относительное превышение вклада тормозных влияний и уменьшение активности холинэргических и серотонинэргических нейронов, стимулирующих кишечную моторику. Определенное значение в возникновении сниженной моторной функции толстой кишки может иметь дисбаланс выработки кишечных гормонов, синтезируемых энтероэндокринными клетками, а именно, дефицит стимуляторов моторики, к которым относятся мотилин, гастрин, грелин и холецистокинин, а также относительный избыток гормонов, подавляющих моторику (соматостатин и вазоактивный интестинальный полипептид). Изменения состава кишечной микробиоты также могут способствовать возникновению ФЗ, что связано с нарушением профиля метаболитов, продуцируемых кишечными бактериями.

Заключение. ФЗ представляет собой классическое мультифакториальное заболевание, в этиологии которого неблагоприятные влияния генотипа сочетаются с множественными приобретенными факторами риска. Более полное понимание молекулярных механизмов развития ФЗ может послужить основой для появления новых эффективных методов лечения этого распространенного заболевания.

Об авторах

М. М. Галагудза
ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр имени В.А. Алмазова» Министерства здравоохранения Российской Федерации; ФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия

Галагудза Михаил Михайлович — доктор медицинских наук, профессор, член-корреспондент РАН, директор Института экспериментальной медицины; профессор кафедры патофизиологии

197341, г. Санкт-Петербург, ул. Аккуратова, 2



Ю. П. Успенский
ФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Министерства здравоохранения Российской Федерации; ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Успенский Юрий Павлович — доктор медицинских наук, профессор, заведующий кафедрой факультетской терапии им. профессора В.А. Вальдмана; профессор кафедры внутренних болезней стоматологического факультета

194100, г. Санкт-Петербург, Литовская ул., 2



Ю. А. Фоминых
ФГБОУ ВО «Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова» Министерства здравоохранения Российской Федерации; ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Фоминых Юлия Александровна — доктор медицинских наук, доцент, профессор кафедры факультетской терапии им. профессора В.А. Вальдмана; доцент кафедры внутренних болезней стоматологического факультета

194100, г. Санкт-Петербург, Литовская ул., 2



Д. Ю. Бутко
ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Бутко Дмитрий Юрьевич — доктор медицинских наук, профессор, заведующий кафедрой медицинской реабилитации и спортивной медицины

194100, г. Санкт-Петербург, Литовская ул., 2



Список литературы

1. Bharucha A.E., Lacy B.E. Mechanisms, Evaluation, and Management of Chronic Constipation. Gastroenterology. 2020;158(5):1232–1249.e3. DOI: 10.1053/j.gastro.2019.12.034

2. Forootan M., Bagheri N., Darvishi M. Chronic constipation: A review of literature. Medicine (Baltimore). 2018;97(20):e10631. DOI: 10.1097/MD.0000000000010631

3. De Giorgio R., Ruggeri E., Stanghellini V., Eusebi L.H., Bazzoli F., Chiarioni G. Chronic constipation in the elderly: a primer for the gastroenterologist. BMC Gastroenterol. 2015;15:130. DOI: 10.1186/s12876-015-0366-3

4. Almario C.V., Ballal M.L., Chey W.D., Nordstrom C., Khanna D., Spiegel B.M.R. Burden of Gastrointestinal Symptoms in the United States: Results of a Nationally Representative Survey of Over 71,000 Americans. Am J Gastroenterol. 2018;113(11):1701–1710. DOI: 10.1038/s41395-018-0256-8

5. Faigel D.O. A clinical approach to constipation. Clin Cornerstone. 2002;4(4):11–21. DOI: 10.1016/s1098-3597(02)90002-5

6. Лазебник Л.Б., Туркина С.В., Голованова Е.В., Ардатская М.Д., Остроумова О.Д., Комиссаренко И.А., и соавт. Запоры у взрослых. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2020;175(3):10–33. [Lazebnik L.B., Turkina S.V., Golovanova E.V., Ardatskaya M.D., Ostroumova O.D., Komissarenko I.A., et al. Constipation in adults. Experimental and Clinical Gastroenterology. 2020;175(3):10–33 (In Russ.)] DOI: 10.31146/1682-8658-ecg-175-3-10-33

7. Ravi K., Bharucha A.E., Camilleri M., Rhoten D., Bakken T., Zinsmeister A.R. Phenotypic variation of colonic motor functions in chronic constipation. Gastroenterology. 2010;138(1):89–97. DOI: 10.1053/j.gastro.2009.07.057

8. Dinning P.G., Smith T.K., Scott S.M. Pathophysiology of colonic causes of chronic constipation. Neurogastroenterol Motil. 2009;21 Suppl 2(Suppl 2):20–30. DOI: 10.1111/j.1365-2982.2009.01401.x

9. Zhao Q., Chen Y.Y., Xu D.Q., Yue S.J., Fu R.J., Yang J., et al. Action Mode of Gut Motility, Fluid and Electrolyte Transport in Chronic Constipation. Front Pharmacol. 2021;12:630249. DOI: 10.3389/fphar.2021.630249

10. Ishikawa M., Mibu R., Iwamoto T., Konomi H., Oohata Y., Tanaka M. Change in colonic motility after extrinsic autonomic denervation in dogs. Dig Dis Sci. 1997;42(9):1950–1956. DOI: 10.1023/a:1018827613809

11. Mawe G.M., Sanders K.M., Camilleri M. Overview of the Enteric Nervous System. Semin Neurol. 2023. DOI: 10.1055/s-0043-1771466.

12. Carabotti M., Scirocco A., Maselli M.A., Severi C. The gut-brain axis: interactions between enteric microbiota, central and enteric nervous systems. Ann Gastroenterol. 2015;28(2):203–209.

13. Corsetti M., Costa M., Bassotti G., Bharucha A.E., Borrelli O., Dinning P., et al. First translational consensus on terminology and definitions of colonic motility in animals and humans studied by manometric and other techniques. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2019;16(9):559–579. DOI: 10.1038/s41575-019-0167-1

14. Corsetti M., Pagliaro G., Demedts I., Deloose E., Gevers A., Scheerens C., et al. Pan-Colonic Pressurizations Associated with Relaxation of the Anal Sphincter in Health and Disease: A New Colonic Motor Pattern Identified Using High-Resolution Manometry. Am J Gastroenterol. 2017;112(3):479–489. DOI: 10.1038/ajg.2016.341

15. Bassotti G., de Roberto G., Castellani D., Sediari L., Morelli A. Normal aspects of colorectal motility and abnormalities in slow transit constipation. World J Gastroenterol. 2005;11(18):2691–2696. DOI: 10.3748/wjg.v11.i18.2691

16. Rao S.S.C., Sadeghi P., Beaty J., Kavlock R. Ambulatory 24-hour colonic manometry in slow-transit constipation. Am J Gastroenterol. 2004;99(12):2405–2416. DOI: 10.1111/j.1572-0241.2004.40453.x

17. Dinning P.G. A new understanding of the physiology and pathophysiology of colonic motility? Neurogastroenterol Motil. 2018;30(11):e13395. DOI: 10.1111/nmo.13395

18. Bharucha A.E. High amplitude propagated contractions. Neurogastroenterol Motil. 2012;24(11):977–982. DOI: 10.1111/nmo.12019

19. Clemens C.H.M., Samsom M., Van Berge Henegouwen G.P., Smout A.J.P.M. Abnormalities of left colonic motility in ambulant nonconstipated patients with irritable bowel syndrome. Dig Dis Sci. 2003;48(1):74–82. DOI: 10.1023/a:1021734414976

20. Xu C., Cong J., Liu T., Jiao C., Li M., Yu Y., et al. The colonic motility and classification of patients with slow transit constipation by high-resolution colonic manometry. Clin Res Hepatol Gastroenterol. 2022;46(9):101998. DOI: 10.1016/j.clinre.2022.101998

21. Deiteren A., Camilleri M., Bharucha A.E., Burton D., McKinzie S., Rao A.S., et al. Performance characteristics of scintigraphic colon transit measurement in health and irritable bowel syndrome and relationship to bowel functions. Neurogastroenterol Motil. 2010;22(4):415–423, e95. DOI: 10.1111/j.1365-2982.2009.01441.x

22. Bouchoucha M., Devroede G., Bon C., Raynaud J.J., Bejou B., Benamouzig R. How many segments are necessary to characterize delayed colonic transit time? Int J Colorectal Dis. 2015;30(10):1381–1389. doi: 10.1007/s00384-015-2277-8

23. Diaz Tartera H.O., Webb D.L., Al-Saffar A.K., Halim M.A., Lindberg G., Sangfelt P., et al. Validation of SmartPill® wireless motility capsule for gastrointestinal transit time: Intra-subject variability, software accuracy and comparison with video capsule endoscopy. Neurogastroenterol Motil. 2017;29(10):1–9. DOI: 10.1111/nmo.13107

24. Steadman C.J., Phillips S.F., Camilleri M., Talley N.J., Haddad A., Hanson R. Control of muscle tone in the human colon. Gut. 1992;33(4):541–546. DOI: 10.1136/gut.33.4.541

25. Bharucha A.E., Hubmayr R.D., Ferber I.J., Zinsmeister A.R. Viscoelastic properties of the human colon. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2001;281(2):G459–G466. DOI: 10.1152/ajpgi.2001.281.2.G459

26. Bharucha A.E., Wald A. Chronic Constipation. Mayo Clin Proc. 2019;94(11):2340–2357. DOI: 10.1016/j.mayocp.2019.01.031

27. Pritchard S.E., Paul J., Major G., Marciani L., Gowland P.A., Spiller R.C., et al. Assessment of motion of colonic contents in the human colon using MRI tagging. Neurogastroenterol Motil. 2017;29(9). DOI: 10.1111/nmo.13091

28. Hussain A., Zhang Z., Yu J., Wei R., Arshad H., Lew J., et al. Haustral rhythmic motor patterns of the human large bowel revealed by ultrasound. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2023;325(4):G295–G305. DOI: 10.1152/ajpgi.00068.2023

29. Peihong M., Tao Y., Zhaoxuan H., Sha Y., Li C., Kunnan X., et al. Alterations of White Matter Network Properties in Patients with Functional Constipation. Front Neurol. 2021;12:627130. DOI: 10.3389/fneur.2021.627130

30. Zhu Q., Cai W., Zheng J., Li G., Meng Q., Liu Q., et al. Distinct resting-state brain activity in patients with functional constipation. Neurosci Lett. 2016;632:141–146. DOI: 10.1016/j.neulet.2016.08.042

31. Liu L., Hu C., Hu Y., Zhang W., Zhang Z., Ding Y., et al. Abnormalities in the thalamo-cortical network in patients with functional constipation. Brain Imaging Behav. 2021;15(2):630–642. DOI: 10.1007/s11682-020-00273-y

32. Tamnes C.K., Ostby Y., Fjell A.M., Westlye L.T., Due-Tønnessen P., Walhovd K.B. Brain maturation in adolescence and young adulthood: regional age-related changes in cortical thickness and white matter volume and microstructure. Cereb Cortex. 2010;20(3):534–548. DOI: 10.1093/cercor/bhp118

33. Hu C., Liu L., Liu L., Zhang J., Hu Y., Zhang W., et al. Cortical morphometry alterations in brain regions involved in emotional, motor-control and self-referential processing in patients with functional constipation. Brain Imaging Behav. 2020;14(5):1899–1907. DOI: 10.1007/s11682-019-00133-4

34. Jia Z., Li G., Hu Y., Li H., Zhang W., Wang J., et al. Brain structural changes in regions within the salience network in patients with functional constipation. Brain Imaging Behav. 2022;16(4):1741–1748. DOI: 10.1007/s11682-022-00648-3

35. Yu X., Yu J., Li Y., Cong J., Wang C., Fan R., et al. Aberrant intrinsic functional brain networks in patients with functional constipation. Neuroradiology. 2023;65(2):337–348. DOI: 10.1007/s00234-022-03064-y

36. Knowles C.H., Scott S.M., Lunniss P.J. Slow transit constipation: a disorder of pelvic autonomic nerves? Dig Dis Sci. 2001;46(2):389–401. DOI: 10.1023/a:1005665218647

37. Dampney R.A., Michelini L.C., Li D.P., Pan H.L. Regulation of sympathetic vasomotor activity by the hypothalamic paraventricular nucleus in normotensive and hypertensive states. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2018;315(5):H1200–H1214. DOI: 10.1152/ajpheart.00216.2018

38. Jänig W., McLachlan E.M. Organization of lumbar spinal outflow to distal colon and pelvic organs. Physiol Rev. 1987;67(4):1332–1404. DOI: 10.1152/physrev.1987.67.4.1332

39. Gillis R.A., Dias Souza J., Hicks K.A., Mangel A.W., Pagani F.D., Hamilton B.L., et al. Inhibitory control of proximal colonic motility by the sympathetic nervous system. Am J Physiol. 1987;253(4 Pt 1):G531–G539. DOI: 10.1152/ajpgi.1987.253.4.G531

40. Hellström P.M., Olerup O., Tatemoto K. Neuropeptide Y may mediate effects of sympathetic nerve stimulations on colonic motility and blood flow in the cat. Acta Physiol Scand. 1985;124(4):613–624. DOI: 10.1111/j.1748-1716.1985.tb00055.x

41. Dorofeeva A.A., Panteleev S.S., Makarov F.N. Involvement of the sacral parasympathetic nucleus in the innervation of the descending colon and rectum in cats. Neurosci Behav Physiol. 2009;39(2):207–210. DOI: 10.1007/s11055-009-9104-z

42. Matsushima Y. [Studies on colonic motor correlates of spontaneous defecation in conscious dogs]. Nihon Heikatsukin Gakkai Zasshi. 1989;25(4):137–146. DOI: 10.1540/jsmr1965.25.137 (In Japanese)

43. Tong W., Tian Y., Yang H., Wang L., Zhao S., Shi H., et al. Expression of transient receptor potential ankyrin 1 correlating to the recovery of colonic transit after pelvic nerve denervation in rats. J Surg Res. 2017;209:206–210. DOI: 10.1016/j.jss.2016.09.057

44. Gribovskaja-Rupp I., Takahashi T., Ridolfi T., Kosinski L., Ludwig K. Upregulation of mucosal 5-HT3 receptors is involved in restoration of colonic transit after pelvic nerve transection. Neurogastroenterol Motil. 2012;24(5):472–478, e218. DOI: 10.1111/j.1365-2982.2012.01890.x

45. Smith A.N., Varma J.S., Binnie N.R., Papachrysostomou M. Disordered colorectal motility in intractable constipation following hysterectomy. Br J Surg. 1990;77(12):1361–1365. DOI: 10.1002/bjs.1800771214

46. Park S.K., Myung S.J., Jung K.W., Chun Y.H., Yang D.H., Seo S.Y., et al. Biofeedback therapy for female patients with constipation caused by radical hysterectomy or vaginal delivery. J Gastroenterol Hepatol. 2013;28(7):1133–1140. DOI: 10.1111/jgh.12158

47. Andersson P.O., Bloom S.R., Järhult J. Colonic motor and vascular responses to pelvic nerve stimulation and their relation to local peptide release in the cat. J Physiol. 1983;334:293–307. DOI: 10.1113/jphysiol.1983.sp014495

48. Hedlund H., Fasth S., Hultén L., Nordgren S. Studies on the integrated extrinsic nervous control of rectal motility in the cat. Acta Physiol Scand. 1985;124(1):43–51. DOI: 10.1111/j.1748-1716.1985.tb07630.x

49. Meerschaert K.A., Davis B.M., Smith-Edwards K.M. New Insights on Extrinsic Innervation of the Enteric Nervous System and Non-neuronal Cell Types That Influence Colon Function. Adv Exp Med Biol. 2022;1383:133–139. DOI: 10.1007/978-3-031-05843-1_13

50. Sharkey K.A., Mawe G.M. The enteric nervous system. Physiol Rev. 2023;103(2):1487–1564. DOI: 10.1152/physrev.00018.2022

51. Michel K., Kuch B., Dengler S., Demir I.E., Zeller F., Schemann M. How big is the little brain in the gut? Neuronal numbers in the enteric nervous system of mice, Guinea pig, and human. Neurogastroenterol Motil. 2022;34(12):e14440. DOI: 10.1111/nmo.14440

52. Mazzuoli-Weber G., Schemann M. Mechanosensitivity in the enteric nervous system. Front Cell Neurosci. 2015;9:408. DOI: 10.3389/fncel.2015.00408

53. Sanders K.M., Ward S.M., Koh S.D. Interstitial cells: regulators of smooth muscle function. Physiol Rev. 2014;94(3):859–907. DOI: 10.1152/physrev.00037.2013

54. Huizinga J.D., Hussain A., Chen J.H. Interstitial cells of Cajal and human colon motility in health and disease. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2021;321(5):G552–G575. DOI: 10.1152/ajpgi.00264.2021

55. Kurahashi M., Zheng H., Dwyer L., Ward S.M., Koh S.D., Sanders K.M. A functional role for the ‘fibroblast-like cells’ in gastrointestinal smooth muscles. J Physiol. 2011;589(Pt 3):697–710. DOI: 10.1113/jphysiol.2010.201129

56. Huizinga J.D., Zarate N., Farrugia G. Physiology, injury, and recovery of interstitial cells of Cajal: basic and clinical science. Gastroenterology. 2009;137(5):1548–1556. DOI: 10.1053/j.gastro.2009.09.023

57. He C.L., Burgart L., Wang L., Pemberton J., Young-Fadok T., Szurszewski J., et al. Decreased interstitial cell of Cajal volume in patients with slow-transit constipation. Gastroenterology. 2000;118(1):14–21. DOI: 10.1016/s0016-5085(00)70409-4

58. Xiao J. Aging Decreases the Density of Colonic Interstitial Cells of Cajal Associated with Constipation in Rats. J Neurogastroenterol Motil. 2018;24(2):326–328. DOI: 10.5056/jnm18016

59. Wang H., Ren B., Pan J., Fu S., Liu C., Sun D. Effect of miR-129-3p on autophagy of interstitial cells of Cajal in slow transit constipation through SCF C-kit signaling pathway. Acta Biochim Pol. 2022;69(3):579–586. DOI: 10.18388/abp.2020_5877

60. Zheng H., Liu Y.J., Chen Z.C., Fan G.Q. miR-222 regulates cell growth, apoptosis, and autophagy of interstitial cells of Cajal isolated from slow transit constipation rats by targeting c-kit. Indian J Gastroenterol. 2021;40(2):198–208. DOI: 10.1007/s12664-020-01143-7

61. Houghton L.A., Atkinson W., Lockhart C., Whorwell P.J., Keevil B. Sigmoid-colonic motility in health and irritable bowel syndrome: a role for 5-hydroxytryptamine. Neurogastroenterol Motil. 2007;19(9):724–731. DOI: 10.1111/j.1365-2982.2007.00943.x

62. Smith T.K., Park K.J., Hennig G.W. Colonic migrating motor complexes, high amplitude propagating contractions, neural reflexes and the importance of neuronal and mucosal serotonin. J Neurogastroenterol Motil. 2014;20(4):423–446. DOI: 10.5056/jnm14092

63. Stanton M.P., Hengel P.T., Southwell B.R., Chow C.W., Keck J., Hutson J.M., et al. Cholinergic transmission to colonic circular muscle of children with slow-transit constipation is unimpaired, but transmission via NK2 receptors is lacking. Neurogastroenterol Motil. 2003;15(6):669–678. DOI: 10.1046/j.1350-1925.2003.00443.x

64. Huang Z., Li S., Foreman R.D., Yin J., Dai N., Chen J.D.Z. Sacral nerve stimulation with appropriate parameters improves constipation in rats by enhancing colon motility mediated via the autonomic-cholinergic mechanisms. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2019;317(5):G609–G617. DOI: 10.1152/ajpgi.00150.2018

65. Vannucchi M.G., Corsani L., Faussone-Pellegrini M.S. Substance P immunoreactive nerves and interstitial cells of Cajal in the rat and guinea-pig ileum. A histochemical and quantitative study. Neurosci Lett. 1999;268(1):49–52. DOI: 10.1016/s0304-3940(99)00366-3

66. Jun J.Y., Choi S., Yeum C.H., Chang I.Y., You H.J., Park C.K., et al. Substance P induces inward current and regulates pacemaker currents through tachykinin NK1 receptor in cultured interstitial cells of Cajal of murine small intestine. Eur J Pharmacol. 2004;495(1):35–42. DOI: 10.1016/j.ejphar.2004.05.022

67. Yik Y.I., Farmer P.J., King S.K., Chow C.W., Hutson J.M., Southwell B.R. Gender differences in reduced substance P (SP) in children with slow-transit constipation. Pediatr Surg Int. 2011;27(7):699–704. DOI: 10.1007/s00383-011-2852-1

68. King S.K., Sutcliffe J.R., Ong S.Y., Lee M., Koh T.L., Wong S.Q., et al. Substance P and vasoactive intestinal peptide are reduced in right transverse colon in pediatric slow-transit constipation. Neurogastroenterol Motil. 2010;22(8):883–892, e234. DOI: 10.1111/j.1365-2982.2010.01524.x

69. Parajuli S.P., Choi S., Lee J., Kim Y.D., Park C.G., Kim M.Y., et al. The inhibitory effects of hydrogen sulfide on pacemaker activity of interstitial cells of Cajal from mouse small intestine. Korean J Physiol Pharmacol. 2010;14(2):83–89. DOI: 10.4196/kjpp.2010.14.2.83

70. Martinez-Cutillas M., Gil V., Mañé N., Clavé P., Gallego D., Martin M.T., et al. Potential role of the gaseous mediator hydrogen sulphide (H2S) in inhibition of human colonic contractility. Pharmacol Res. 2015;93:52–63. DOI: 10.1016/j.phrs.2015.01.002

71. L’Heureux M.C., St-Pierre S., Trudel L., Plourde V., Lepage R., Poitras P. Digestive motor effects and vascular actions of CGRP in dog are expressed by different receptor subtypes. Peptides. 2000;21(3):425–430. DOI: 10.1016/s0196-9781(00)00160-1

72. Holzer P., Holzer-Petsche U. Constipation Caused by Anti-calcitonin Gene-Related Peptide Migraine Therapeutics Explained by Antagonism of Calcitonin Gene-Related Peptide’s Motor-Stimulating and Prosecretory Function in the Intestine. Front Physiol. 2022;12:820006. DOI: 10.3389/fphys.2021.820006

73. Gribble F.M., Reimann F. Enteroendocrine Cells: Chemosensors in the Intestinal Epithelium. Annu Rev Physiol. 2016;78:277–299. DOI: 10.1146/annurev-physiol-021115-105439

74. Xu L., Depoortere I., Tomasetto C., Zandecki M., Tang M., Timmermans J.P., et al. Evidence for the presence of motilin, ghrelin, and the motilin and ghrelin receptor in neurons of the myenteric plexus. Regul Pept. 2005;124(1-3):119–125. DOI: 10.1016/j.regpep.2004.07.022

75. Mori H., Verbeure W., Tanemoto R., Sosoranga E.R., Tack J. Physiological functions and potential clinical applications of motilin. Peptides. 2023;160:170905. DOI: 10.1016/j.peptides.2022.170905

76. Ulusoy E., Arslan N., Küme T., Ülgenalp A., Çirali C., Bozkaya Ö., et al. Serum motilin levels and motilin gene polymorphisms in children with functional constipation. Minerva Pediatr (Torino). 2021;73(5):420–425. DOI: 10.23736/S2724-5276.16.04369-X

77. Ahmed M., Ahmed S. Functional, Diagnostic and Therapeutic Aspects of Gastrointestinal Hormones. Gastroenterology Res. 2019;12(5):233–244. DOI: 10.14740/gr1219

78. Sessenwein J.L., Lomax A.E. Ghrelin receptors as targets for novel motility drugs. Neurogastroenterol Motil. 2015;27(5):589–593. DOI: 10.1111/nmo.12562

79. Czkwianianc E., Kolejwa M., Bossowski A., Wawrusiewicz-Kurylonek N., Glowacka E., Makosiej A., et al. Ghrelin, Obestatin and Their Receptors as Well as Metabotropic Glutamate Receptor Assessment in Chronic Functional Constipation in Children. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 2021;73(2):203–209. DOI: 10.1097/MPG.0000000000003124

80. Ko B.S., Han J.H., Jeong J.I., Chae H.B., Park S.M., Youn S.J., et al. Mechanism of action of cholecystokinin on colonic motility in isolated, vascularly perfused rat colon. J Neurogastroenterol Motil. 2011;17(1):73–81. DOI: 10.5056/jnm.2011.17.1.73

81. John E.S., Chokhavatia S. Targeting Small Bowel Receptors to Treat Constipation and Diarrhea. Curr Gastroenterol Rep. 2017;19(7):31. DOI: 10.1007/s11894-017-0573-x

82. Beck K., Voussen B., Reigl A., Vincent A.D., Parsons S.P., Huizinga J.D., et al. Cell-specific effects of nitric oxide on the efficiency and frequency of long distance contractions in murine colon. Neurogastroenterol Motil. 2019;31(6):e13589. DOI: 10.1111/nmo.13589

83. Koch T.R., Carney J.A., Go L., Go V.L. Idiopathic chronic constipation is associated with decreased colonic vasoactive intestinal peptide. Gastroenterology. 1988;94(2):300–310. doi: 10.1016/0016-5085(88)90416-7

84. Milner P., Crowe R., Kamm M.A., Lennard-Jones J.E., Burnstock G. Vasoactive intestinal polypeptide levels in sigmoid colon in idiopathic constipation and diverticular disease. Gastroenterology. 1990;99(3):666–675. DOI: 10.1016/0016-5085(90)90953-x

85. Esteban-Zubero E., López-Pingarrón L., Alatorre-Jiménez M.A., Ochoa-Moneo P., Buisac-Ramón C., Rivas-Jiménez M., et al. Melatonin’s role as a co-adjuvant treatment in colonic diseases: A review. Life Sci. 2017;170:72–81. DOI: 10.1016/j.lfs.2016.11.031

86. Zhu L., Liu W., Alkhouri R., Baker R.D., Bard J.E., Quigley E.M., et al. Structural changes in the gut microbiome of constipated patients. Physiol Genomics. 2014;46(18):679–686. DOI: 10.1152/physiolgenomics.00082.2014

87. Mancabelli L., Milani C., Lugli G.A., Turroni F., Mangifesta M., Viappiani A., et al. Unveiling the gut microbiota composition and functionality associated with constipation through metagenomic analyses. Sci Rep. 2017;7(1):9879. DOI: 10.1038/s41598-017-10663-w

88. Ohkusa T., Koido S., Nishikawa Y., Sato N. Gut Microbiota and Chronic Constipation: A Review and Update. Front Med (Lausanne). 2019;6:19. DOI: 10.3389/fmed.2019.00019

89. Yu T., Ding Y., Qian D., Lin L., Tang Y. Characteristics of fecal microbiota in different constipation subtypes and association with colon physiology, lifestyle factors, and psychological status. Therap Adv Gastroenterol. 2023;16:17562848231154101. DOI: 10.1177/17562848231154101

90. Bunnett N.W. Neuro-humoral signalling by bile acids and the TGR5 receptor in the gastrointestinal tract. J Physiol. 2014;592(14):2943–2950. DOI: 10.1113/jphysiol.2014.271155

91. Vikström Bergander L., Cai W., Klocke B., Seifert M., Pongratz I. Tryptamine serves as a proligand of the AhR transcriptional pathway whose activation is dependent of monoamine oxidases. Mol Endocrinol. 2012;26(9):1542–1551. DOI: 10.1210/me.2011-1351

92. Obata Y., Castaño Á., Boeing S., Bon-Frauches A.C., Fung C., Fallesen T., et al. Neuronal programming by microbiota regulates intestinal physiology. Nature. 2020;578(7794):284–289. DOI: 10.1038/s41586-020-1975-8

93. Ye L., Bae M., Cassilly C.D., Jabba S.V., Thorpe D.W., Martin A.M., et al. Enteroendocrine cells sense bacterial tryptophan catabolites to activate enteric and vagal neuronal pathways. Cell Host Microbe. 2021;29(2):179–196.e9. DOI: 10.1016/j.chom.2020.11.011

94. Cherbut C., Ferrier L., Rozé C., Anini Y., Blottière H., Lecannu G., et al. Short-chain fatty acids modify colonic motility through nerves and polypeptide YY release in the rat. Am J Physiol. 1998;275(6):G1415–G1422. DOI: 10.1152/ajpgi.1998.275.6.G1415

95. Ghoshal U.C., Srivastava D., Misra A. A randomized double-blind placebo-controlled trial showing rifaximin to improve constipation by reducing methane production and accelerating colon transit: A pilot study. Indian J Gastroenterol. 2018;37(5):416–423. DOI: 10.1007/s12664-018-0901-6

96. Attaluri A., Jackson M., Valestin J., Rao S.S.C. Methanogenic flora is associated with altered colonic transit but not stool characteristics in constipation without IBS. Am J Gastroenterol. 2010;105(6):1407–1411. DOI: 10.1038/ajg.2009.655

97. Федоров И.Г., Ильченко Л.Ю., Косюра С.Д., Чичкина М.А. Клинические аспекты применения лактулозы в практике гастроэнтеролога. Трудный пациент. 2012;4:37–42. [Fedorov I.G., Ilchenko L.Y., Kosyura S.D., Chichkina M.A. Clinical aspects of lactulose use in gastroenterologist practice. Difficult Patient. 2012;4:37–42. (In Russ.)].

98. Лопаткина Т.Н., Кудлинский И.С. Лактулоза (Дюфалак) в лечении печеночной энцефалопатии у больных циррозом печени. Фарматека. 2012;7:12–17. [Lopatkina T.N., Kudlinsky I.S. Lactulose (Duphalac) in the Treatment of Hepatic Encephalopathy in Cirrhotic Patients. Farmateka. 2012;7:12–17. (In Russ.)].

99. Ruszkowski J., Witkowski J.M. Lactulose: Patient- and dose-dependent prebiotic properties in humans. Anaerobe. 2019;59:100–106. DOI: 10.1016/j.anaerobe.2019.06.002

100. Chu N., Ling J., Jie H., Leung K., Poon E. The potential role of lactulose pharmacotherapy in the treatment and prevention of diabetes. Front Endocrinol (Lausanne). 2022;13:956203. DOI: 10.3389/fendo.2022.956203

101. Karakan T., Tuohy K.M., Janssen-van Solingen G. Low-Dose Lactulose as a Prebiotic for Improved Gut Health and Enhanced Mineral Absorption. Front Nutr. 2021;8:672925. DOI: 10.3389/fnut.2021.672925

102. Tuohy K.M., Ziemer C.J., Klinder A., Knöbel Y., Pool-Zobel B.L., Gibson G.R. A Human Volunteer Study to Determine the Prebiotic Effects of Lactulose Powder on Human Colonic Microbiota. Microb Ecol Health Dis. 2002;14(3):165–173. DOI: 10.1080/089106002320644357

103. Collins S.L., McMillan A., Seney S., van der Veer C., Kort R., Sumarah M.W., et al. Promising Prebiotic Candidate Established by Evaluation of Lactitol, Lactulose, Raffinose, and Oligofructose for Maintenance of a Lactobacillus-Dominated Vaginal Microbiota. Appl Environ Microbiol. 2018;84(5):e02200-17. DOI: 10.1128/AEM.02200-17


Дополнительные файлы

Рецензия

Для цитирования:


Галагудза М.М., Успенский Ю.П., Фоминых Ю.А., Бутко Д.Ю. Патогенез нарушений моторной функции толстой кишки при функциональном запоре. Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии. 2024;34(3):24-37. https://doi.org/10.22416/1382-4376-2024-34-3-24-37

For citation:


Galagudza M.M., Uspensky Yu.P., Fominykh Yu.A., Butko D.Yu. Pathogenesis of Disorders of the Motor Function of the Large Intestine in Functional Constipation. Russian Journal of Gastroenterology, Hepatology, Coloproctology. 2024;34(3):24-37. https://doi.org/10.22416/1382-4376-2024-34-3-24-37

Просмотров: 511


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 License.


ISSN 1382-4376 (Print)
ISSN 2658-6673 (Online)