Характер морфологических и нейрофизиологических изменений у женщин с синдромом опущения промежности

Цель исследования. Проведение морфологической оценки соединительнотканных структур промежности и выявление нейрофизилогических нарушений тазового дна у пациенток с синдромом опущения промежности (СОП).
Материал и методы. Объектом исследования послужили 39 женщин в возрасте от 21 года до 68 лет с СОП, имевших клинико-инструментальные признаки синдрома опущения промежности.
Выполнено сравнительное исследование строения соединительных структур у 14 пациенток с СОП – основная группа и у 10 женщин без клиникоинструментальных признаков СОП – контрольная группа. У 27 пациенток с СОП исследовались проводимость по половым нервам, латентность F-волны и потенциал двигательной активности анального сфинктера.
Результаты. У обследованных основной группы выявлены изменения коллагенового каркаса кожи промежности, связок таза, стенок влагалища с заметной диссоциацией, дезорганизацией и деструкцией коллагена, что сопровождалось выраженным гиперэластозом и лимфостазом в соединительнотканных структурах промежности.
У 88,8% пациенток с СОП обнаружено статистически значимое нарушение проведения электрических импульсов по половым нервам, а у 70,4% – выраженная денервация нервных волокон рефлекторной дуги от крестцового отдела позвоночника до анального сфинктера.
Выводы. Наряду с отчетливыми изменениями соединительнотканных структур промежности, СОП характеризуется нейрофизилогическими нарушениями тазового дна, регистрирующимися не только в зоне периферической иннервации, но и на протяжении всей рефлекторной дуги.

1. Балан В.Е. Урогенитальные расстройства в климактерии (клиника, диагностика, заместительная гормонотерапия): Автореф. дис. ... д-ра мед. наук. – М., 1998.

2. Гаджиева З.К. Функциональное состояние нижних мочевых путей и медикаментозная коррекция нарушений мочеиспускания у женщин в климактерии: Дис. ... канд. мед. наук. – М., 2001.

3. Кадурина Т.И. Наследственные коллагенопатии. – СПб, 2000.

4. Радзинский В.Е. Перинеология. – М.: Мед. информ. агентство. 2006; 14–96.

5. Смольнова Т.Ю., Буянова С.Н., Савельев C.B., Петрова В.Д. Дисплазия соединительной ткани как одна из возможных причин недержания мочи у женщин с пролапсом гениталий. Урология, 2001; 2:25–30.

6. Badiou W, Granier G, Bousquet PJ, et al. Comparative histological analysis of anterior vaginal wall in women with pelvic organ prolapse or control subjects. A pilot study. Int Urogynecol J Pelvic Floor Dysfunct. 2008 May;

7. (5):723–9. Epub 2008 Jan 9.

8. Barbiero EC, Sartori MG, Girao MJ, et al. Analysis of type I collagen in the parametrium of women with and without uterine prolapse, according to hormonal status. Int Urogynecol J Pelvic Floor Dysfunct. 2003; 14:331–4.

9. Cole EE, Leu PB, Gomelsky A, et al. Histopathological evaluation of the uterosacral ligament: is this a dependable structure for pelvic reconstruction? BJU Int. 2006 Feb; 97 (2):345–8.

10. Crauciuc E, Dumitrache F, Frîncu DL. Connective tissue modifications in the pelvi-perineal prolapse at menopause. Rev Med Chir Soc Med Nat Iasi. 2005 Apr–Jun; 109 (2):314–8.

11. Dai YX, Lang JH, Zhu L, et al. Microarray analysis of gene expression profiles in pelvic organ prolapse. Zhonghua Fu Chan Ke Za Zhi. 2010 May; 45 (5):342–7.

12. Ibeanu OA, Chesson RR, Sandquist D, et al. Hypertrophic cervical elongation: clinical and histological correlations. Int Urogynecol J Pelvic Floor Dysfunct. 2010 Aug; 21 (8): 995–1000. Epub 2010 Mar 24.

13. Jackson S, James M, Abrams P. The effect of estradiol on vaginal collagen metabolism in postmenopausal women with genuine stress incontinence. Br J Obstet Gynecol. 2002; 109: 339–44.

14. Jundt K, Kiening M, Fischer P, et al. Is the histomorphological concept of the female pelvic floor and its changes due to age and vaginal delivery correct? Acta Obstet Gynecol Scand. 2004 Dec; 83 (12): 1193–8.

15. Lang J, Zhu L, Sun Z, Chen J. Clinical study on collagen and stress urinary incontinence. J Anat. 2001 Nov; 199 (Pt 5):599–607.

16. Lee UJ, Gustilo-Ashby AM, Daneshgari F, et al. Lower urogenital tract anatomical and functional phenotype in lysyl oxidase like-1 knockout mice resembles female pelvic floor dysfunction in humans. Am J Physiol Renal Physiol. 2008 Aug; 295 (2):545–55. Epub 2008 May 21.

17. Reay Jones NH, Healy JC, King LJ, et al. Pelvic connective tissue resilience decreases with vaginal delivery, menopause and uterine prolapse. Clin Exp Obstet Gynecol. 2002; 29 (3):180–2.

18. Rizk DE, Hassan HA, Al Marzouqi AH, et al. Combined estrogen and ghrelin administration restores number of blood vessels and collagen type I/III ratio in the urethral and anal canal submucosa of old ovariectomized rats. Int Urogynecol J Pelvic Floor Dysfunct. 2008. 19: 547–52.

19. Söderberg MW, Falconer C, Byström B, et al. Young women with genital prolapse have a low collagen concentration. Br J Surg. 2003 Apr; 90 (4):466–72.

20. Suzme R, Yalcin O, Gurdol F, et al. Connective tissue alterations in women with pelvic organ prolapse and urinary incontinence. Acta Obstet Gynecol Scand. 2007; 86 (7):882–8.

21. Yiou R, Delmas V, Carmeliet P, et al. The pathophysiology of pelvic floor disorders: evidence from a histomorphologic study of the perineum and a mouse model of rectal prolapse. Acta Obstet Gynecol Scand. 1999 Jan; 78 (1):2–5.

22. Zhu L, Lang JH, Chen J, Chen J. Morphologic study on levator ani muscle in patients with pelvic organ prolapse and stress urinary incontinence. Neurourol Urodyn. 2005; 24 (1):44–50.

23. Zhu L, Lang JH, Feng RE, Chen J. Study on estrogen receptor around levator ani muscle for female stress urinary incontinence. Zhonghua Fu Chan Ke Za Zhi. 2004 Oct; 39 (10):655–7.